1 / 90

人体与动物生理学实验

人体与动物生理学实验. EXPERIMENT OF HUMAN AND ANIMAL PHYSIOLOGY. 生命科学学院. 目录 INDEX. EXP1. 动物生理实验基本技术 EXP2. 血红蛋白（ Hb ）的测定 EXP3. 小肠吸收和渗透功能的测定 EXP4. 蛙类心搏过程的观察和描记 EXP5. 蛙类心室的期前收缩和代偿性间歇 EXP6. 蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备 EXP7. 蟾蜍坐骨神经刺激强度、频率与肌肉收缩的关 系 EXP8. 蟾蜍坐骨神经神经干动作电位及其传导速度测定 EXP9. 蟾蜍坐骨神经神经干传导速度测定 EXP10. 胰岛素惊厥.

martena-burnett
Télécharger la présentation

人体与动物生理学实验

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript

  1. 人体与动物生理学实验 EXPERIMENT OF HUMAN AND ANIMAL PHYSIOLOGY 生命科学学院

  2. 目录 INDEX • EXP1.动物生理实验基本技术 • EXP2.血红蛋白（Hb）的测定 • EXP3.小肠吸收和渗透功能的测定 • EXP4.蛙类心搏过程的观察和描记 • EXP5.蛙类心室的期前收缩和代偿性间歇 • EXP6.蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备 • EXP7.蟾蜍坐骨神经刺激强度、频率与肌肉收缩的关系 • EXP8.蟾蜍坐骨神经神经干动作电位及其传导速度测定 • EXP9.蟾蜍坐骨神经神经干传导速度测定 • EXP10.胰岛素惊厥

  3. 实验一 动物生理实验基本技术 【实验目的】 熟悉动物生理学的基本实验技术。 【实验内容】 1、手术刀、手术剪和止血钳等基本手术器械的使用方法。 2、打结等手术的基本操作技术。 3、动物麻醉、固定、暴露器官及采血等基本生理实验技术。 4、生物信号系统的使用方法。 实验目的 实验内容

  4. 1. 手术器械及用法 • 刀：姿势有指压式、执笔式及挑式等 实验目的 实验内容

  5. 1. 手术器械及用法 • 剪：外壳剪、眼科剪、毛剪、骨剪、普通剪。 实验目的 实验内容

  6. 手术器械及用法 • 镊：用于剥离、剪断和缝合，眼科镊、外科镊。 实验目的 实验内容

  7. 1. 手术器械及用法 • 钳：止血钳、持针钳 实验目的 实验内容

  8. 1. 手术器械及用法 • 注射器：玻璃注射器、塑料注射器 实验目的 实验内容

  9. 1. 手术器械及用法 • 注射器：玻璃注射器、塑料注射器 实验目的 实验内容

  10. 2. 打结等手术的基本操作技术 • 结的种类：方结（平结），三叠结（加强结），外科结， • 假结（斜结） 实验目的 实验内容

  11. 3.动物固定、麻醉等实验技术 • 徒手保定 • （用于家兔麻醉时的保定） • 手术台保定 保 定 实验目的 实验内容

  12. 3.动物固定、麻醉等实验技术 • 部位 从耳外缘静脉注射 • 药物2%戊巴比妥钠 • 剂量1ml/kg 体重 • 麻醉判断 当动物四肢松软、 • 呼吸变慢、瞳孔缩小、角膜反 • 射迟钝、痛觉消失时，表明已麻醉 麻 醉 实验目的 实验内容

  13. 4. RM6240C信号采集处理系统的使用 1）系统组成 系统由硬件和软件两部分组成。硬件包括外置程控放大器、数据采集板、数据线及各种信号输入输出线。软件(V1.02)主要由RM6240.ExE及多个实验子模块组成。软件与硬件协调工作，实现系统的多种功能。其面板上设置有外接信号输入插座、刺激器输出插座、记滴及监听插座。 实验目的 实验内容

  14. RM6240C信号采集处理系统的使用 实验目的 RM6240C前后面板 实验内容

  15. RM6240C信号采集处理系统的使用 2）系统运行 打开外置的“生理实验系统”电源(若仅对以前记录的波形进行分析，不作示波及记录，则可不开外置仪器)，然后开启计算机，用鼠标双击计算机屏幕上的 实验目的 实验内容

  16. 3）系统功能 (l)刺激器(图)对话框中的参数设置必须通过每一参数项右边的上下箭头调节，直接通过键盘输入无效。如果仅通过鼠标点击方向箭头，则数字以 0.1为单位变化；如果点击鼠标的同时，按仕SHIFT功能键，则数字以l为单位变化；按住Ctrl功能键，则数字以10为中位变化。 实验目的 实验内容 刺激器对话框

  17. (2)监听功能只供第一通道使用，可用于减压神经放电、膈神经放电、肌棱放电等实验。使用时将电脑的有源音箱与仪器的监听插孔接通即可。(2)监听功能只供第一通道使用，可用于减压神经放电、膈神经放电、肌棱放电等实验。使用时将电脑的有源音箱与仪器的监听插孔接通即可。 (3)记滴功能在示波菜单中，选择记滴功能，弹出如下对话框。选择“开始记滴”按钮，在“开始时刻”对话框中系统自动记录这一时刻，并在“速率”框中自动显示当前尿滴的速率。此时“开始记滴”按钮变为“停止记滴”，在您需要的时候，按“停止记滴”按钮。系统自动显示记滴时间、滴数和平均速率。如果您需要记录波形、请先“开始记录”，再“开始记滴”。 实验目的 实验内容 记滴功能对话框

  18. 【注意事项】 1. 任何实验，只要生物信号无问题，要取得好的实验效果，关键是实验参数(用系统界面右边控制参数区的按键调节)的设置，实际上取决于选择合适的“采集频 率”“通道模式”“扫描速度”“灵敏度”“时间常数”“滤波频率”。 2. 注意开机顺序应先开外置仪器，然后再进入“实验系统”，如果末开外置仪器即进入“实验系统”，系统无法进行“示波”或“记录”，此时应退出软件系统，开启外置仪器后再进入系统，对有些笔记本电脑，则需重新启动计算机。 实验目的 实验内容 注意事项 思考题

  19. 实验二 血红蛋白（Hb）的测定 • 【实验目的】 • 掌握测定血红蛋白含量的基本方法—比色法。 • 【实验原理】 • 测定血红蛋白含量的方法很多，实验常用比色法。其原理是在一定量的血液中，血红蛋白经少量盐酸的作用，使亚铁血红素变成高铁血红素，呈现较稳定的棕色。用水稀释后与标准色比较，求出每100 ml血液中所含的血红蛋白克数。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题

  20. 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 【实验器材】 血红蛋白计、0. 1 mol/L盐酸（先用量筒量取8.5 mL的浓盐酸倒入容量瓶，然后将溶液加蒸馏水稀释至体积为1 L，此时的溶液就是0.1mol/L的盐酸）、滤纸片、95％酒精、蒸馏水。

  21. 1.用滴管加0.1N盐酸于血红蛋白稀释管内，到刻度“2”处。1.用滴管加0.1N盐酸于血红蛋白稀释管内，到刻度“2”处。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 【实验方法与步骤】

  22. 2.用血红蛋白吸管吸血至刻度20μL处。 3.将血液加到盐酸中（避免起泡），震荡摇匀，静置10min。 4.用滴管向稀释管内逐滴加入蒸馏水（每加一滴要震荡摇匀）， 边滴边观察颜色，直至颜色与标准比色板相同为止。稀释管 上液面的刻度读数即为每100ml血液中血红蛋白的克数。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题

  23. 【注意事项】 1.吹血液入稀释管及洗净吸管时，不宜用力过猛。 2.蒸馏水需逐滴加入，多做几次比色，以免稀释过量。每 次比色时，应将搅拌用的玻璃棒取出，以免影响比色。 3.由于作过程过长而造成吸管内血液凝固。堵塞管孔时， 则要按下列溶液的顺序重复冲洗吸管，即用水 95％酒精 乙醚或丙酮。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题

  24. 【思考题】 实验目的 1．血液中血红蛋白含量的多少是否能反映机体 的健康状况？为什么？ 2．测定血红蛋白的实际意义是什么？ 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题

  25. 实验三 小肠吸收和渗透功能的测定 • 【实验目的】 • 了解小肠吸收与肠内容物渗透压的关系。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  26. 【实验原理】 实验目的 • 肠内容的渗透压是制约肠吸收的重要因素。同种溶液在一定浓度范围，浓度越高吸收越慢。过浓时可导致反渗透现象，要在浓度降至一定程度后，溶质才被吸收。而水的吸收是被动的渗透过程，即需待溶质被吸收后，溶液成低渗时，水再向肠壁、血液中转移。由于饱和硫酸镁溶液对肠壁具有反渗透作用，因此可用作泻盐。 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  27. 【实验材料】 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题 实验动物：兔 实验器材：注射器，兔手术台，手术器械，棉线，纱布， 烧杯，25%乌拉坦溶液，1/10000肾上腺素、 1/100000乙酰胆碱、饱和硫酸镁溶液、0.7%氯 化钠溶液

  28. 【实验方法与步骤】 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题 1.耳缘静脉注射将动物麻醉，仰卧固定于手术台上，腹部备皮。 2.沿腹中线做剖开腹腔，用线将小肠扎成各为8cm长的肠段A、 B和C。 3.在A段注入饱和硫酸镁溶液，B段注入30ml 0.7NaCl溶液，C段 注入蒸馏水溶液 4. 将肠段送入腹腔闭腹，30min后检查3肠段的变化。

  29. 30mL 0.7%氯化钠 5mL饱和硫酸镁 蒸馏水 B A C 在A段注入饱和硫酸镁溶液，B段注入30ml 0.7NaCl溶液，C段注入蒸馏水溶液。将肠段送入腹腔闭腹，30min后检查3肠段的变化

  30. A B

  31. 【注意事项】 • 1.结扎肠段时，应防止把血管结扎。 • 2. 注意实验动物的保温。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  32. 【思考题】 • 1. 为什么可以将硫酸镁作为泻药？ • 2. 实验结果是什么？为什么会出现这种现象？ 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  33. 实验四 蛙类心搏过程的观察和描记 【实验目的】 • 1．学习暴露蛙类心脏的方法，熟悉心脏的结构。 • 2．观察心脏各部分自动节律性活动的时相及频率。 • 3．学习在体蛙类心脏活动的描记方法。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  34. 【实验原理】 • 两栖类动物的心脏为两心房、一心室，心脏的起搏点是静脉窦。静脉窦的自动节律最高，心房次之，心室最低。正常情况下，心脏的活动节律服从静脉窦的节律，其活动顺序为：静脉窦、心房、心室。这种有节律的活动可以用机械方法或通过换能器记录下来，称为心搏曲线。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题

  35. 【实验原理】 窦性心律（sinus rhythm） 实验目的 实验原理 异位心律（ectopic rhythm） 实验器材 实验内容 注意事项 抢先占领 超速驱动抑制 思考题

  36. 【实验材料】 • 实验动物：蟾蜍或蛙 • 实验器材：常用手术器械、蛙板、蛙腿固定夹、蛙心夹、记纹鼓与通用杠杆或记录仪与张力换能器、秒表、滴管、培养皿、棉线。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  37. 【实验方法与步骤】 • 1．暴露心脏破坏蟾蜍的脑和脊髓后背位固定于蛙板 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题 方法二 方法一

  38. 【实验方法与步骤】 • 2．观察心脏的结构 • 3．观察心搏过程仔细观察静脉窦、心房及心室收缩的 • 顺序和频率。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  39. 【实验方法与步骤】 表1 斯氏结扎记录表 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  40. 【思考题】 实验目的 1．斯氏第一结扎后，房室搏动发生什么变化，为什么？ 2．斯氏第二结扎后，房室搏动频率有何不同，为什么？ 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题

  41. 实验五 蛙类心室的前期收缩和代偿性间歇 【实验目的】 • 1．学习在体蛙（或蟾蛛）心跳曲线的描记方法。 • 2．通过观察心室在不同收缩时期对额外刺激的反应，了解心肌的生理特性。 • 3．通过实验阐述心肌产生期前收缩的条件与代偿间歇出现的机制。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题

  42. -90~0~+30~-60mV 特点： 有效不应期特别长。 250～300ms 骨骼肌仅1～3ms 心肌细胞同神经纤维和骨骼肌细胞一样具有兴奋性 实验目的 有效不应期： 实验原理 实验器材 实验内容 相对不应期 注意事项 超常期 思考题 【实验原理】

  43. 期前收缩（premature systole）或额外收缩： 实验目的 在心肌的有效不应期之后，和下次节律兴奋传来之前，给予心肌一次额外的刺激，则可引发心肌一次提前的收缩。 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 代偿性间歇(compensatory pause)——在一次期前收缩之后，常有一段较长的心脏舒张期，称为代偿性间歇。 思考题

  44. 【实验材料】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 实验动物：蟾蜍或蛙 实验器材：常用手术器械、蛙板、、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿（或小烧杯）、纱布、棉线、丝线、铁支架、任氏液。

  45. 【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 1．系统连接和仪器参数设置如下。 (1)打开Pclab计算机采集系统，接通张力传感器输人第一通道，刺激电极连接刺激输人端口。 (2) 点击“实验”菜单，选择“常用生理学实验”中的“期前收缩与代偿间歇”项目，系统进入该实验信号记录状态。 (3)设置参数：chl放大倍数200-500倍，直流藕合（DC)，上限频率40 Hz，高通滤波“无”，自动触发，采样间隔1 - 5 ms；单刺激方式，阂上刺激强度2 -5 V，波宽1-5ms。

  46. 【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 2．取一只蟾蛛，用蛙针 破坏蟾蛛的脑和脊髓， 将其仰卧固定于蛙板上。

  47. 【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 3．观察蟾蛛心脏兴奋的传导次序，计算心率，记录正常的心搏曲线作为对照。并辨认心房波和心室波，确定趋向的哪一部分代表心室收缩，哪一部分代表心室舒张。

  48. 【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 4．按照图2-5-2的装置，将刺激电极安放在心室外壁，使之既不影响心搏又能同心室紧密接触。

  49. 【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 图2-5-3蛙类心室的期前收缩和代偿间歇波形 5．选择能引起心室发生期外收缩的刺激强度（于心室舒张期调试），分别于心室收缩期和舒张期的早、中、晚给予单个刺激（注意：刺激前后要有3-4个正常心搏曲线作对照，不可连续输出2个刺激）。观察心搏曲线有无变化。重复并肯定实验结果。

  50. 【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 6．同上法，加大刺激强度，观察心室肌对额外刺激的反应。 7．心肌“全”或“无”的反应：用丝线在静脉窦与心房之间做一结扎，心脏跳动停止。然后给予,I-m1下刺激及不同强度的r-41上刺激，观察蛙心收缩强度的变化。

More Related