UNIVERSIDAD VERACRUZANA FAC. DE BIOANALISIS XALAPA EE. MICOLOGIA Examen directo y Medios de cultivo

1. UNIVERSIDAD VERACRUZANAFAC. DE BIOANALISIS XALAPAEE. MICOLOGIA Examen directo yMedios de cultivo Presentan: Rosas Ordoñez Gabriela Dulce Dilian Ortiz Soto Cruz Rivera Paula Ameyali Vela Veliz Mayra Irais López Guerra Domingo Lara Sánchez Elías Reyes KarolLeyda

2. Recordar que…. Los hongos crecen en dos formas: • Levaduras • Células únicas de forma esférica (3-15 µm). • producto de gemación. • pseudohifas • Mohos • Colonias filamentosas multicelulares. • Túbulos cilíndricos • Micelos • Algunos divididos por septos. Brook G, Butel j, Morse S. 2005.

3. Especímenes clínicos

6. Dx Micológico

7. Examen Directo

8. Limitaciones

12. Cultivo de la Muestra (envases)

13. Cultivo de la Muestra (Agar) Saburaud Micosel, micobiótico • 2% glucosa. • pH 6.9 • Medios estándar. • No ideal para esporulación. • Puede contener cloranfenicol o gentamicina. • Harina de soja • Dextrosa • Ciclohexamida y cloranfenicol

14. Papa-Dextrosa BHI con/sin Antibiótico • Base de pulpa de papa. • Glucosa/dextrosa Como estimulante de pigmento: • Zanahoria y bilis • Hongos filamentosos y levaduras. • Sangre de carnero. Antibiótico: • Cloranfenicol, Gentamicina, Cicloheximida. Colonias de Penicillium expansum (A) y Botrytis cinerea (B), creciendo en medio Agar Papa Dextrosa. Conservar a 2-8 °C en una bolsa

15. Temperatura • 25-30 °C • 37 °C Tiempo • Levaduras 24-48 hr. • Hongos filamentosos • No patógenos 2-4 días • Patógenos 6-15 días

16. Identificación de hongos

17. Algodonosa • Aterciopelada • Granular o polvorienta • glabrosa

18. (colinas y valles) • Rugosa • Umbonada • Verrucosa • Aplanada

19. Examen del Cultivo Cardaje

20. Cinta Adhesiva • Microcultivo

21. Trichophyton rubrum

22. Trichophyton tonsurans

23. Trichophyton mentagrophytes

24. Microsporum canis

25. Epidermophyton floccosum

26. Pitiriasis Versicolor

27. Coccidioides immitis Fase tisular 37 °C Fase micelial 25-30 °C

28. Aspergillus spp. • Morfología colonial

29. Medios de cultivo Aspergillus terreus on Czapek dox agar showing typical suede-like cinnamon-buff to sand brown colonies while reverse is yellow to deep dirty brown.

31. Identificación de Estructuras

35. Bibliografía • Murray P, Rosenthal K, Pfaüer M. (2006). Microbiología Medica. 5 edic. Edit. El sevier. Madrid. España. Pp 734-736. • Brook G, Butel j, Morse S. (2005). microbiología Medica de Jawetz, Mednicky Adelberg. 25 edic. Edit. Manual moderno. Cali. Colombia. P. 621. • Pumarola A, Rodríguez A, García J, Piedrola G. (nd). Microbiología y parasitología Medica. 2 edic. edit. Salvat. Barcelona. España. P 752. • González G. (nd). Métodos básicos en el laboratorio de micología. Identificación de hongos. Consultado el 17 de marzo del 2012. disponible en: http://goo.gl/cfa7v • Magaña M, Magaña M. dermatología. (2003). Editorial panamericana. México DF. Pp. 22 [versión web] • Silva D. (nd). Pitiriasis versicolor. Consultado el 17 de marzo del 2012. disponible en: http://www.pediatraldia.cl/pitiriasis_versicolor.htm • SA. (nd). Agares. Consultado el 17 de marzo del 2012. disponible en: http://danival.org/fungi/fungi_medios.html • BD. (2007). Mycosel Agar. Consultado el 17 de marzo del 2012. disponible en: http://goo.gl/TJbzY • Biocen. Agar Czapek-Dox . Consultado el 17 de marzo del 2012. disponible en: http://www.biocen.cu/producto/indicemc/lmcp1.htm • HWG. (2002-2011). Agar Czapek-Dox . Consultado el 17 de marzo del 2012. disponible en: http://www.mold.ph/aspergillus-terreus.htm