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单克隆抗体制备

单克隆抗体制备. Monoclonal antibody 单个 B 淋巴细胞克隆所产生的针对同一个 抗原决定簇的抗体。分三个阶段: ( 1 )免疫 Balb/c 小鼠 ( 2 )建立筛选方法和程序 ( 3 )杂交瘤的生成. 一、动物免疫. 1 Balb/c 小鼠 6-8 周龄, 25g 左右,雌性较佳 2 免疫方法 ( 1 )首次腹腔免疫 0.5 ml 抗原与福氏完全佐剂 1 : 1 的混和液,一般 2-3 只鼠 ( 2 ) 30 天后加强免疫,用福氏不完全佐剂. ( 3 ) 15 天后,尾静脉注射 0.1mL 水剂抗原,免疫 3 天后,去脾脏融合

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单克隆抗体制备

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Presentation Transcript


  1. 单克隆抗体制备 Monoclonal antibody 单个B淋巴细胞克隆所产生的针对同一个 抗原决定簇的抗体。分三个阶段: (1)免疫Balb/c小鼠 (2)建立筛选方法和程序 (3)杂交瘤的生成

  2. 一、动物免疫 1 Balb/c小鼠 6-8周龄,25g左右,雌性较佳 2 免疫方法 (1)首次腹腔免疫0.5 ml抗原与福氏完全佐剂 1:1的混和液,一般2-3只鼠 (2)30天后加强免疫,用福氏不完全佐剂

  3. (3)15天后,尾静脉注射0.1mL水剂抗原,免疫 3天后,去脾脏融合 对于抗原性弱的抗原,可增加免疫次数,具体 程序依抗原性质而定。

  4. 可溶性蛋白(提取或表达的蛋白) 50-100μg 颗粒性蛋白(病毒) 50-100μg 细菌 106CFU 活细胞 (哺乳动物细胞) 105-7CFU 活癌源细胞 104-6CFU 糖类(多糖、糖蛋白) 100-200μg 核酸 100-200μg

  5. 二、骨髓瘤细胞的培养 1 在液氮罐中取保存的SP2/0细胞,以 MEM培养基复苏,37℃ CO2培养箱中培养 2 在对数生长期收获107-108CFU的 SP2/0细胞 3 500 g离心5min,弃上清 4 轻轻振动离心管以松动细胞,重悬于20 mL MEM营养液中

  6. 注意要点: 1 如细胞外观不健康,或生长密度不好,应检测是否 有支原体污染 2 一次用一个冻存管里的细胞融合,应避免长期培养 3 融合的细胞要处于对数生长期

  7. 三、饲养细胞的制备 1 取清洁级ICR小鼠2只,断颈椎杀死小鼠,置 70%酒精溶液中浸泡10min 2 将小鼠四肢固定,腹部朝上 3 在生物安全柜内,无菌打开小鼠腹部皮肤 4 用20mL注射器吸取15mLMEM营养液,注入 小鼠腹腔

  8. 5 轻轻挤压小鼠腹腔,并用注射器来回抽吸几 次, 将小鼠腹腔内的巨噬细胞吸出,置细胞 瓶内待用 6 将饲养细胞转至50mL离心管内,500g离心 5min,以HAT培养基重悬细胞,转至细胞培 养瓶内待用

  9. 注意事项: 1 严禁用燃烧的棉球对小鼠消毒 2 吸取腹腔饲养细胞时,不能将肠道刺破,否 则会造成污染 3 如腹腔里的脂肪块堵塞针头,应调整针头的 位置,重新吸取细胞液

  10. 四、脾细胞的制备 1 取Balb/c小鼠2只,断颈椎杀死小鼠,置 70%酒精溶液中浸泡10min 2 将小鼠四肢固定,腹部朝上 3 在生物安全柜内,无菌打开小鼠腹腔 4 小心分离出脾脏,置含有7mLMEM营养液的培 养皿内

  11. 5 用针头刺破脾脏,并用弯针头挤压脾脏,将脾 细胞分离出来 6 用吸管吹打细胞团块,将细胞悬液吸置50mL离 心管中,沉降5min 7 将细胞悬液吸置另外一支离心管中,500g离心 5min,弃上清,沉淀以20mL MEM培养基重悬

  12. 注意事项: 1 严禁用燃烧的棉球对小鼠消毒 2 取脾脏时,如果脾脏被脂肪粘连,需小心, 不能撕裂或撕碎脾脏,更不能将肠道撕破 3 如果脾脏没用肿胀,表明免疫效果不好, 应选用备用小鼠的脾脏

  13. 五、细胞融合及培养 1 以2:1混合脾脏细胞和SP2/0细胞,加至细 胞融合管中 2 在室温下500g离心10min,弃上清 3轻轻振动离心管以松动和混合细胞,后置 37℃水浴 4 在60S内用巴氏吸管将0.8mL预热至37℃ PEG1500缓慢加至细胞内,并轻轻抽吸两次

  14. 5 在90S内,用移液管轻轻将30mL预热至 • 37℃的MEM培养基加至融合管中 • 37℃水浴5min • 室温下500g离心10min,弃上清 • 在融合管内加入HAT培养基20mL,将沉淀悬浮,后移置250mL的玻璃瓶中,并加入HAT培养基30mL,后加入10-15mL饲养细胞悬液

  15. 9 将细胞悬液加至96孔细胞培养板中,每孔2- 3滴,约0.1-0.15mL 10 将细胞培养板置37℃ 饱和湿度的CO2培养 箱中培养 11 培养3天后可取出细胞板在倒置显微镜下观 察细胞融合情况

  16. 12 培养置第5天时用HAT培养基换液,换1/2 13 7-8天用HT培养基换液,全部换液 14 10-14天后,杂交瘤细胞占孔底1/3以上, 细胞上清变黄,可以检测融合细胞上清里 的抗体。

  17. 注意事项: 1 脾脏细胞与SP2/0细胞的比例在2:1— 5:1最好 2 细胞融合是关键步骤,避免用力吸打 3 细胞融合后3天要注意检查是否污染,包括 细菌和真菌,一发现污染,要尽快弃去 4 换液时不要影响孔底的杂交瘤细胞,不要吸出或冲散

  18. 六、杂交瘤细胞的筛选 大约有10%的杂交瘤细胞能分泌抗体,而分泌特异性抗体的杂交瘤细胞更少,故需要筛选。筛选抗体分泌细胞有多种方法,如HA-HI、IFA、ELISA等。其中间接ELISA应用最广。

  19. 注意事项: 1 因单抗是鼠源的,故酶标记抗抗体常用酶标羊抗鼠或兔抗鼠抗体,包括抗IgG、IgM的抗体。如 单用酶标记抗IgG抗体,则IgM类单抗就不能被筛选出来。 2 阳性克隆转移到24孔细胞培养板中,细胞长满后,上清再检测一次 3 筛选方法应在细胞融合前建立好,一部筛选特异单抗的方法最好

  20. 七、杂交瘤细胞克隆 在分泌特异性单抗的杂交瘤细胞中,可能混有不分泌单抗的细胞克隆;另外分泌单抗的克隆在初代不稳定,有一部分细胞染色体常丢失,为了防止不分泌抗体的细胞过度生长,在早期应对细胞进行克隆。常用有限稀释法,一般来说,杂交瘤经过3-4次克隆后就稳定了。

  21. 1 在克隆的前一天,准备数块含有0.1mL饲养细胞的96孔板 2 将24孔板里的待克隆细胞悬浮,取0.1mL细胞悬液加入0.9mL台盼蓝染色液,混匀 3 血液计数板计数 4 在24孔培养板上,对待克隆细胞悬液进行10倍比稀释

  22. 5 当稀释至100CFU/mL时,取1mL细胞悬液至装有10mLHT培养基的瓶中,再分别加至96孔板中(预先加有饲养细胞),0.1mL/孔 6将细胞培养板置37℃ 饱和湿度的CO2培养箱中培养10天左右,注意观察 7 大约3-4天在倒置显微镜下可见细胞克隆,5-7天换液一次, 8 10天左右克隆长满,可以检测上清

  23. 注意事项: 1 上清液要在24 h内测定 2 细胞计数时只计活细胞(淡蓝色),死细胞为深蓝色,且没有光泽 3 如有高质量的FCS ,可不用饲养细胞 4 一个克隆需亚克隆3-4次,才稳定 5 如有孔污染,可向感染孔及临近孔滴加1mol/mL的Cu SO4溶液

  24. 七、实验室规模抗体制备 体外上清液培养 1 杂交瘤细胞先在25mL 的细胞培养瓶中培养 2 细胞长满瓶底后转至50或100mL的细胞培养瓶中培养 3 当细胞液变黄后,收集上清液,再加新鲜的培养液,并重复收集上清2次 4让细胞长至饱和状态,直至死亡,并收集上清

  25. 体内生产腹水 1 正常培养杂交瘤细胞 2 饲养Balb/c小鼠,注射细胞一周前通过腹腔注射0.5mL降植烷 3 在细胞对数生长期收获细胞,并进行计数,将细胞数量以培养液调整至(2-10)×107CFU 4 小鼠腹腔注射0.5mL细胞悬液,1-2周后发展成癌性腹水

  26. 5 用注射器收集腹水,3-4天收集一次,每只鼠 可收集2-3次 6 腹水5000g离心10min,收集澄清的上清, 除去油脂 7 加入0.05%的叠氮钠,小量分装保存。长期 置-70℃保存;备用4 ℃保存

  27. 八、杂交瘤细胞的保存 1 培养杂交瘤细胞至对数生长期 2 弃去细胞培养上清,以Hanks液洗涤一次 3 弃去洗涤液,加入含10%DMSO、10%犊 牛血清的MEM培养基,吹打细胞 4 将细胞悬液加入细胞冻存管,每中等细胞培 养瓶分两管,先放-70℃冰箱冻30min,然后置液氮罐中保存

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