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ESCUELA POLITÉCNICA DEL EJÉRCITO DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA

“INOCULACIÓN COMBINADA DE HONGOS MICORRÍCICO-ARBUSCULARES Y Azospirillum spp . EN PLÁNTULAS DE BANANO ( Musa paradisiaca ) MICROPROPAGADAS: EFECTOS SOBRE EL DESARROLLO Y CRECIMIENTO DURANTE LA FASE DE ACLIMATACIÓN”. Previo a la obtención del título de: INGENIERA EN BIOTECNOLOGÍA.

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ESCUELA POLITÉCNICA DEL EJÉRCITO DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA

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Presentation Transcript


  1. “INOCULACIÓN COMBINADA DE HONGOS MICORRÍCICO-ARBUSCULARES Y Azospirillum spp. EN PLÁNTULAS DE BANANO (Musa paradisiaca) MICROPROPAGADAS: EFECTOS SOBRE EL DESARROLLO Y CRECIMIENTO DURANTE LA FASE DE ACLIMATACIÓN” Previo a la obtención del título de: INGENIERA EN BIOTECNOLOGÍA ESCUELA POLITÉCNICA DEL EJÉRCITO DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA ESPE-HOLDINGDINE Tania Carina Villarreal Villarreal

  2. INTRODUCCIÓN 230.000 has 32% producción mundial (AEBE, 2010) 100 millones ha 100 millones ton (FAO,2004)

  3. INTRODUCCIÓN Mejorar manejo agrícola Incremento de la producción Agricultura sostenible (WRM, 2004) (AEBE ,2010)

  4. BIOTECNOLOGÍA

  5. Objetivo General Analizar el efecto de la inoculación combinada de Hongos micorrícicos arbusculares (HMA) y Azospirillum sp, sobre el desarrollo y crecimiento de plántulas de banano (Musa paradisiaca) micropropagadas durante la fase de aclimatación. OBJETIVOS ObjetivosEspecíficos • Aislar y propagar Azospirillum sp. y esporas de HMA nativas del cultivo de banano. • Inocular y determinar el efecto de diferentes dosis de HMA y Azospirillum sp. así como su interacción, sobre las variables de crecimiento de la planta y el contenido de macro y micronutrientes en el tejido foliar y suelo • Evaluar el % colonización y la población final de esporas en plántulas de banano micropropagadas durante la fase de aclimatación. • Determinar la población final de Azospirillum sp. presente en el sustrato y en raíces de las plantas de banano. • Determinar la dosis de HMA y de Azospirillum sp. que permitan obtener los mejores resultados respecto a las variables evaluadas.

  6. HIPÓTESIS La co-inoculación de HMA y Azospirillum sp.mejoran el crecimiento (altura, perímetro del pseudotallo, área foliar, biomasa aérea, biomasa radical y contenido de nutrientes) de las plántulas de banano micropropagadas durante la fase de aclimatación

  7. MARCO TEÓRICO Macronutrientes N, P, K Micronutrientes Ca, Mg, S Fe, Mn, Zn, B, Cu T= 25°C Riego=160-180 mm/mes Musa paradisiaca

  8. CICLO DE VIDA DE LOS HMA (DESARROLLO DE LA SIMBIOSIS) HONGOS MICORRÍCICOS ARBUSCULARES (HMA) • Absorción de nutrientes y agua • Resistencia a patógenos • Agregación del suelo Fase simbiótica BENEFICIOS Fase asimbiótica Fase presimbiótica (Bonfante & Anca, 2009)

  9. BACTERIAS PROMOTORAS DEL CRECIMIENTO VEGETAL Azospirillum MECANISMOS DE PROMOCIÓN DEL CRECIMIENTO VEGETAL INTERACCIÓN Azospirillum -PLANTA

  10. MATERIALES Y MÉTODOS Figura 1. Conteo poblacional de esporas de HMA nativas del cultivo de banano en 7 hdas. Bananeras de HDineAgros S.A

  11. 30% arena 10% turba negra 60% suelo negro Elaboración de cultivo trampa a) Desinfección y lavado de semillas, b) Llenado de macetas con sustrato, c) Siembra de semillas de avena, d) Riego con agua destilada, d) Mantenimiento de cultivos trampa. Figura 2. Incremento de la densidad poblacional de esporas de HMA en cultivo trampa de avena.

  12. DISEÑO EXPERIMENTAL Diseño completamente al azar Repeticiones: 9 UE: 1 planta Total: 144 plantas

  13. a) Fraccionamiento de inóculo por tratamiento, b) Llenado de macetas con sustrato, c) Aplicación de tratamientos, d) Trasplante de plántulas de banano, e) Riego con solución nutritiva, f) Ubicación de macetas en cámara de crecimiento

  14. Selección de cepas Azospirillum “sospechosas” Figura 3. Curva patrón de ácido indól acético Figura 4. Concentración de AIA producido por las cepas de Azospirillum Aislamiento de bacterias diazótrofas Aislamiento y selección de Azospirillum Incubación 30°C / 14 d

  15. POBLACIÓN FINAL DE ESPORAS Y % COLONIZACIÓN MICORRÍCICA RESULTADOS Tabla 1. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el incremento la población final de esporas de HMA Figura 5. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el incremento la población final de esporas de HMA Girish, 2006: Azospirillum y Glomusfasciculatum en tomate Tabla 2. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el porcentaje de colonización micorrícica

  16. Población final de Azospirillum RESULTADOS + Tabla 3. Población final de Azospirillum en suelo y raíces de banano Belimovet al, 1999: Azospirillum y HMA en cebada

  17. ALTURA 7H / Control RESULTADOS b = 0,05 d= 21,29 b = 0,05 d= 11,24 Figura 7. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el incremento de altura para el período 70-150 días Tabla 4. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el incremento de altura para el período 70-150 días Figura 6. Modelo de Gompertz para la altura

  18. PERÍMETRO 4P/Control RESULTADOS b = 0,03 d= 6,60 b = 0,13 d= 4,45 Figura 9. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el incremento de perímetro para el período 70-150 días Figura 8. Modelo de Gompertz para el perímetro. Tabla 5. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el incremento de perímetro para el período 70-150 días

  19. ÁREA FOLIAR RESULTADOS Figura 11. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el incremento del área foliar para el período 70-150 días Tabla 6. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre el incremento de área foliar para el período 70-150 días Figura 10. Modelo de Gompertz para el área foliar 16AF/Control

  20. BIOMASA AÉREA RESULTADOS Figura 13. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre la biomasa aérea de plantas de banano. Tabla 7. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre la biomasa aérea 12BA/Control Figura 12. Modelo de Gompertz para la biomasa aérea

  21. 4BR/Control BIOMASA RADICAL RESULTADOS Figura 15. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre la biomasa radical de plantas de banano. Tabla 8. Efecto de la inoculación de HMA y Azospirillum sobre la biomasa radical Yano-Melo et al, 1999: Glomusy Acaulospora(banano) Baset et al, 2009: Azospirillum Sp7 banano Jaizme et al, 2004: Bacillus+Glomus(banano) Figura 14. Modelo de Gompertz para la biomasa radical

  22. CONTENIDO DE NUTRIENTES a b RESULTADOS a b c NUTRIENTES EN TEJIDO FOLIAR Contenido de Nitrógeno Contenido de Fósforo Contenido de Potasio NUTRIENTES EN SUELO Contenido de Nitrógeno Contenido de Fósforo Jaizme & Rodríguez, 2002: Glomus(3P , 3N) Baset et al (2009): Azospirillum Sp7 (2N , 2P) Girish, 2006: Glomus+Azospirillum(2N, 2P)

  23. CONCLUSIONES • La Hacienda Central poseía la mayor densidad poblacional de propágulos de HMA entre las 7 hdas. bananeras evaluadas. • Utilizando 30% de suelo de la Hacienda Central, un sustrato de suelo - arena (1:1) y plantas de avena como hospederas, se obtuvo (tras cinco meses de propagación) un inóculo micorrícico que contenía 10 esporas/g de suelo. • La cepa G4b de Azospirillum fue la que produjo mayor cantidad de AIA (6,33 μg/ml) en relación a las cepas restantes y fue seleccionada como cepa inóculo. • La co-inoculación de 200 g de HMA y 1,5E8 UFC/ml de Azospirillum favorece el crecimiento de las plántulas de banano, permitiendo incrementar 7 veces la altura, 4 veces el perímetro, 16 veces el área foliar, 12 veces la biomasa aérea y 8 veces la biomasa radical, en relación a las plantas control.

  24. CONCLUSIONES • La co-inoculación de 200 g de HMA y 1,5E8 UFC/ml de Azospirillum promueve una mejor absorción de fósforo y nitrógeno. • La población final de esporas de HMA y el porcentaje de colonización, son favorecidos por la co-inoculación de Azospirillum, alcanzando los mayores valores (62,67 esporas/g y 96,67%) para la interacción de HMA- Azospirillum en sus mayores dosis • La población final de Azospirillum incrementa cuando se co-inoculan con HMA.

  25. RECOMENDACIONES • Realizar un ensayo similar utilizando menor número de tratamientos y más repeticiones para lograr obtener resultados que permitan determinar en forma concreta el efecto de cada uno de los microorganismos y de su interacción sobre el desarrollo y nutrición de banano. • Evaluar el efecto de mayores concentraciones de Azospirillum sobre el desarrollo de plántulas de banano, a fin de determinar la concentración máxima que beneficia a la planta y la dosis a la que se registran perjuicios sobre su desarrollo. • Incrementar el porcentaje de turba en el sustrato para el crecimiento de las plantas o aumentar el tiempo de aplicación de solución nutritiva, a fin de alcanza niveles óptimos de fósforo en el suelo que no perjudiquen a los HMA pero que permitan una adecuada nutrición de las plantas. • Evaluar la productividad de las plantas de banano co-inoculadas con HMA y Azospirillum en campo.

  26. GRACIAS

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