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2. ESTRUCTURA Y PROPIEDADES DE PROTEÍNAS.

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2. ESTRUCTURA Y PROPIEDADES DE PROTEÍNAS.

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  2. Ciclo de Cori. LDH

  3. 2. Purificación de la enzima lactato deshidrogenasa de músculo esquelético de bovino.PARTE I. EXTRACCIÓN Y PRECIPITACIÓN POR SALADO.

  4. ¿Para qué purificar una proteína? • Fitasa • Lipasa • Hexosa oxidasa • Vacuna Hepatitis B • Insulina • Gelatina • Proteínas recombinantes varias • Suero fetal bovino • Colorante de carne • Proteína liofilizada • Caracterización de la actividad biológica de la proteína. • Para estudios sobre la estructura-función

  5. Guía básica para la purificación de una proteína

  6. Fases para la purificación de una proteína Fase I.El objetivo inicial es la obtención del homogeneizado o extracto crudo y su clarificación o concentración. Fase II.El objetivo principal es remover una cantidad importante de contaminantes que pueden ser proteínas, ácidos nucleicos, toxinas y virus. Uno de los métodos más utilizados para eliminar proteínas contaminantes es el de la precipitación. Fase III. El objetivo es obtener una proteína pura o con mínimas trazas de contaminantes. Para alcanzar el objetivo se utilizan uno o la combinación de varios métodos cromatográficos, como la cromatografía de exclusión molecular, intercambio iónico, interacción hidrofóbica y de afinidad.

  7. SELECCIÓN DE LA FUENTE DE LA PROTEÍNA. • La elección de la procedencia de la proteína debe basarse en criterios tales como: • la facilidad de obtener cantidades suficientes del tejido del que se aísla la proteína, • la cantidad de la proteína de interés en el tejido y • cualquier propiedad peculiar de la proteína escogida, que ayudará en su estabilización y su aislamiento.

  8. FASE I Métodos para la ruptura mecánica de las células

  9. Tamaño de las proteínas, propiedad utilizada para su separación. • El tamaño de las proteínas es medido usualmente en masa molecular, aunque algunas veces se menciona su longitud y diámetro (en Å). • El peso molecular es la masa de 1 mol de proteína, usualmente se expresa en daltones. • Un daltón es la masa atómica de un protón o neutrón. • La masa se puede determinar con métodos como: la electroforesis, la filtración en gel y la espectrometría de masas. • Los métodos de separación de proteínas en los que se incluyen tanto forma como tamaño son: la cromatografía en filtración en gel (size exclusión chromatography y la electroforesis en gel de poliacrilamida.

  10. FASE I Centrifugación • La centrifugación aprovecha la propiedades de tamaño, forma y densidad de las proteínas para separarlas de otras moléculas que presentan características distintas. • Como resultado, el efecto de la gravedad para cada proteína es diferente. • En principio, se pueden separar organelos de una solución homogénea de partículas, al exponer a la muestra a diferente fuerza gravitatoria.

  11. FASE I No olvidar al homogeneizar en que compartimiento celular se encuentra la proteína de interés

  12. FASE I Diagrama de flujo para la obtención de diferentes fracciones subcelulares Centrifugación diferencial

  13. FASE I Centrifugación en gradiente

  14. FASE I La fuerza centrífuga relativa (RCF) • se calcula con la siguiente ecuación: • Donde RPM son las revoluciones por minuto de un rotor con una distancia r (expresada en mm). El radio usado es la distancia del centro del eje del rotor a la posición intermedia del tubo.

  15. FASE I Diagrama de flujo para la obtención de diferentes fracciones subcelulares Centrifugación diferencial

  16. FASE II Remover contaminantes y/o concentrar la muestra • Precipitación: cambio de pH, incremento en la temperatura, adición de solventes, moléculas cargadas, etc. • Pero, el método más comúnmente empleado es la precipitación por salado con (NH4)2SO4.

  17. FASE II Solubilidad • Es la cantidad de soluto que puede disolverse en un solvente. • La estructura 3-D de la proteína afecta sus propiedades de solubilidad. • Cada proteína tiene una solubilidad característica en un ambiente definido (amortiguador, tipo de solvente, pH, fuerza iónica, temperatura, etc.) y si se cambian esas condiciones puede causar que las proteínas pierdan sus propiedades de solubilidad y precipiten en solución.

  18. FASE II “Salting in” y “salting out” • “Salting in”. Las proteínas globulares aumentan su solubilidad al incrementar la concentraciones de iones. • Pero cuando se eleva la concentración de iones la proteína disminuye su solubilidad y se agrega (“salting out”).

  19. Fase I ¿Cómo vamos a purificar a la lactato deshidrogenasa de músculo de bovino?

  20. FASE II ¿Cómo calcular la concentración de sulfato de amonio a utilizar?

  21. FASE II Existen tablas que nos indican cuanto añadir de sulfato de amonio

  22. Y también en internet • http://www.proteinchemist.com/cgi-bin/s2.pl • Conocer: • Sulfato de amonio sólido • Conocer el volumen de la solución • Y la concentración final de la sal

  23. Eliminar la sal • Una vez que se obtiene el pp de una mezcla proteína hay que eliminar la sal o medio utilizado para la precipitación. • La sal puede interferir en los posteriores pasos de purificación • La sal puede alterar las propiedades biológicas de la proteína

  24. Bajar o eliminar la concentración de sal • Diálisis • Utilizar la cromatografía filtración en gel, para perder las moléculas de bajo peso molecular (Sefadex-G25). • Utilizar filtración a través de membranas de diámetro especifico.

  25. Cromatografía de filtración en gel o exclusión molecular • Fase sólidaestacionaria consiste de un gel de tamaño molecular determinado. • Fase móvil. Acarreara a la mezcla de proteína

  26. Cromatografía exclusión molecular • Proteínas de alto peso molecular salen primero de la columna • Después las proteínas de bajo peso molecular.

  27. Determinar a cada fracción: 1. Actividad y 2. concentración de proteína

  28. Usos de la cromatografía de exclusión molecular

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