1 / 37

DIAGNOSTICO DE LABORATORIO DE RABIA

DIAGNOSTICO DE LABORATORIO DE RABIA. MV, MPVM, Dr. SP (c) RICARDO LOPEZ INGUNZA. TOMA, CONSERVACIÓN, REMISIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS. TIPO DE MUESTRAS. El diagnóstico de rabia POST MORTEM - CEREBRO (ASTA DE AMÓN) - CEREBELO - MEDULA

beate
Télécharger la présentation

DIAGNOSTICO DE LABORATORIO DE RABIA

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. DIAGNOSTICO DE LABORATORIO DE RABIA MV, MPVM, Dr. SP (c) RICARDO LOPEZ INGUNZA

  2. TOMA, CONSERVACIÓN, REMISIÓN Y TRANSPORTE DE MUESTRAS

  3. TIPO DE MUESTRAS • El diagnóstico de rabia POST MORTEM - CEREBRO (ASTA DE AMÓN) - CEREBELO - MEDULA • El diagnóstico de rabia IN VIVO- HUMANOS - SUERO - SALIVA (líquido y torunda) - LIQUIDO CEFALORAQUIDEO - BIOPSIA DE PIEL DE NUCA

  4. CONDICIONES DEL ENVÍO DE MUESTRAS • Si son muestras animales enviar el cerebro, cerebelo y médula oblonga con 50% de glicerina y 50% de suero fisiológico estéril. • Si son muestras de humanos las muestras deberán de enviarse congeladas en hielo seco en contenedores apropiados. • Comunicar al Lab de Zoonosis Virales del INS si son muestras de humanos, 617-6200 anexo 2147.

  5. MEDIDAS BÁSICAS DE BIOSEGURIDAD PARA LA TOMA DE MUESTRAS DE RABIA • Inmunización antirrábica del personal (Esquema de pre-exposición 0,7,21) • Uso obligatorio de mandil y protector de hule. • Utilizar guantes gruesos, mascarilla, lentes y gorro cuando se extrae la muestra • Lugar apropiado (ideal una sala de necropsia). • Desinfectantes apropiados (lejía, solución jabonosa, etc.)

  6. INSTRUMENTAL NECESARIO PARA LA EXTRACCION DE CEREBRO DEL ANIMAL

  7. Procedimiento de obtención de muestras • Sujetar firmemente la cabeza del animal sobre la mesa o superficie de trabajo, si fuera posible con la ayuda de algún dispositivo mecánico.

  8. Obtención de muestras de cerebro, cerebelo y médula • Realizar una incisión profunda a lo largo de la línea media del cráneo, empezando por delante hasta la base del cráneo

  9. Obtención de muestras de cerebro, cerebelo y médula • Separar la piel lo máximo posible exponiendo los huesos del cráneo.

  10. Obtención de muestras de cerebro, cerebelo y médula • Realizar cuatro cortes al cráneo con la sierra: -Un corte transversal inmediatamente detrás de la órbita ocular. -Un corte transversal en la base del occipital. • Dos cortes longitudinales en ambos parietales uniendo los cortes anteriores

  11. Obtención de muestras de cerebro, cerebelo y médula • Cortar las meninges, levantar el cerebro hasta llegar al bulbo y cortar a ese nivel. • En animales grandes retirar porciones de corteza, cerebelo, asta de Ammon y médula y depositarlas en envases primarios para su envío respectivo.

  12. En caso de cortes y/o inoculación accidental lavarse cuidadosamente con abundante agua y jabón Utilizar un desinfectante (alcohol, solución iodada 5-7%, amonio cuaternario 1:500. Notificar al responsable. Buscar atención médica (vacunación antirrábica) Medidas a tomar frente a una exposición accidental

  13. Al término de la toma de muestra • Limpiar y descontaminar las mesas de trabajo al final de cada operación. • Los materiales contaminados reusables se separarán de los descartables y se descontaminarán por autoclave u otro método. • Los animales contaminados deben ser incinerados o autoclavados. • Lavarse las manos con abundante agua y jabón.

  14. TRIPLE ENVASE

  15. Envío de muestras • Las muestras se enviarán individualmente rotuladas indicando el número de muestra y su procedencia. • Adjuntar el oficio de solicitud • Adjuntar la ficha epidemiológica por cada muestra

  16. Marcado del embalaje • Colocar remitente (nombre y dirección) • Colocar etiqueta: MUESTRA PARA DIAGNÓSTICO DE RABIA Instituto Nacional de Salud Capac Yupanqui 1400, Jesús María Lima

  17. DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO TÉCNICAS DE RUTINA: • Inmunofluorescencia directa: 3 días • Prueba biológica: 28 días RESULTADOS • A través del NETLAB: enviar solicitud de acceso obtenida de pagina web.

  18. ¿DE QUÉ AÑO ES ESTA FOTOGRAFÍA?

  19. CASOS DE RABIA CONFIRMADOS, INS, 2013 (23/04/13)

  20. TOTAL DE MUESTRAS REMITIDAS AL INS PARA DIAGNÓSTICO DE RABIA, Perú, 2010 - 2013 * Hasta el 23-04-13

  21. TOTAL DE MUESTRAS REMITIDAS PARA DIAGNOSTICO DE RABIA AL INS, 2010 -2013* *Al 23-04-13

  22. ¿CUÁL ES LA REGIÓN QUE REMITIÓ MAYOR CANTIDAD DE MUESTRAS EN EL PERÍODO 2010-2013?

  23. MUESTRAS REMITIDAS AL INS PARA DIAGNOSTICO DE RABIA, POR REGION, 2010-2013

  24. MUESTRAS REMITIDAS AL INS PARA DIAGNOSTICO DE RABIA, POR REGION, 2010-2013

  25. Muestras de MURCIÉLAGOS - Dx de rabia, 2010-2013, INS

  26. Muestras de CANES - Dx de rabia, 2010-2013, INS

  27. ¿Cuál es la región que remite mayor cantidad de muestras que NO se pueden procesar?

  28. MUESTRAS NO PROCESADAS POR LLEGAR EN MALAS CONDICIONES, 2010-2013, INS

  29. MUESTRAS REMITIDAS PARA DIAGNÓSTICO DE RABIA AL INS POR ESPECIE, 2010 AL 2013

  30. MUESTRAS REMITIDAS PARA DIAGNÓSTICO DE RABIA AL INS POR ESPECIE, 2010 AL 2013

  31. La Plaza San Martín fue inaugurada el 17 de junio de 1921 con el motivo del Centenario de la Independencia del Perú. • El monumento al General San Martín fue elegido en un concurso vencido por el escultorespañolMariano Benlliure y representa a San Martín cruzando los andes a caballo.

  32. RLOPEZ@INS.GOB.PE • rlopezingunza@hotmail.com INSTITUTO NACIONAL DE SALUD

More Related