1 / 15

CMI en milieu gélosé

CMI en milieu gélosé. Culture d’une souche d’ E.coli pure de 18 heures. Poudre d’antibiotique d’ampicilline titrée (ou à défaut de la poudre à usage parentéral). En utilisant une balance de précision; p eser 20 mg de l’antibiotique à tester. Tampon phosphate pH= 8 0,1 mol/l .

jered
Télécharger la présentation

CMI en milieu gélosé

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. CMI en milieu gélosé

  2. Culture d’une souche d’ E.coli pure de 18 heures

  3. Poudre d’antibiotique d’ampicilline titrée (ou à défaut de la poudre à usage parentéral)

  4. En utilisant une balance de précision; peser 20 mg de l’antibiotique à tester

  5. Tampon phosphate pH= 8 0,1 mol/l 20 mg Ampicilline Diluer l’antibiotique dans le solvant approprié. Le volume utilisé dépend du titre de l’antibiotique: Titre X 0,1= volume (ml). Exemple: poudre qui titre 98 % : 98 X 0,1= 9,8 ml on obtient une solution mère 2000 µg/ ml.

  6. Liste des solvants

  7. Numéroter une série de 14 tubes à vis Répartir l’eau distillée stérile selon le schéma suivant:

  8. Une fois dilué l’antibiotique peut être conservé à +4° C en attendant son utilisation dans la même journée.

  9. 18 ml MH Mueller Hinton- MH (flacon de 250 ml) Faire fondre le Mueller Hinton (MH) et le maintenir à une température voisine de 45°C. Calibrer un tube à 18 ml.

  10. Numéroter une série de boîtes de 0,016 à 128 en tenant compte de l’orientation de la boîte. Inclure une boîte témoin (T). Verser 2 ml de chaque dilution d’antibiotique dans la boîte correspondante: Ex: dilution 0,16 µg / ml boîte 0,016 µg /ml Pour la boîte témoin, remplacer l’antibiotique par 2 ml d’eau distillée stérile. Incorporer 18 ml de MH dans chaque boîte et mélanger par mouvements rotatoires.

  11. Laisser solidifier les boîtes (couvercle vers le haut)

  12. Inoculation: préparer le schéma d’inoculation. déposer un volume de 2 µl par inoculum - à l’aide d’un appareil de Steers automatique. - manuellement, à l’aide d’une micropipette et d’embouts stériles une même boîte peut servir à tester jusqu’à 26 souches tester une souche de référence pour chaque série de CMI

  13. Incubation: les conditions d’incubation sont fonction des exigences de la bactérie étudiée.

  14. Lecture: Tenir compte du schéma d’inoculation. Enlever le couvercle des boîtes pour la lecture. Vérifier la croissance bactérienne sur la boîte témoin. Noter la plus petite dilution qui ne donne plus de culture visible (la présence de 3 colonies est tolérée).

  15. Interprétation des résultats Reporter les résultats respectifs d’E.coli ATCC 25922 et de la souche testée. Interpréter les résultats obtenus, en s’aidant du fascicule de standardisation. Classer la souche dans la catégorie R, I ou S selon le résultat. Dans cet exemple: E.coliATCC 25922  CMI =8µg/ml (2-8)  Test conforme Souche testée  CMI =4µg/ml (8-32)  Souche sensible

More Related