1 / 26

KÜL- ÉS BELTENYÉSZTETT, TRANSZGENIKUS ÉS GÉNKIÜTÖTT ÁLLATOK. KLÓNOZÁS

KÜL- ÉS BELTENYÉSZTETT, TRANSZGENIKUS ÉS GÉNKIÜTÖTT ÁLLATOK. KLÓNOZÁS. Dr. Jánossy Tamás SZTE, ÁOK, Sebészeti Műtéttani Intézet. Modellválasztás az orvostudományi és a biológiai kutatásokban 1. A megfelelő állatfaj kiválasztása: Leggyakrabban használt állatfajok:

ezhno
Télécharger la présentation

KÜL- ÉS BELTENYÉSZTETT, TRANSZGENIKUS ÉS GÉNKIÜTÖTT ÁLLATOK. KLÓNOZÁS

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. KÜL- ÉS BELTENYÉSZTETT, TRANSZGENIKUS ÉS GÉNKIÜTÖTT ÁLLATOK. KLÓNOZÁS Dr. JánossyTamás SZTE, ÁOK, Sebészeti Műtéttani Intézet

  2. Modellválasztás az orvostudományi és a biológiai kutatásokban 1. A megfelelő állatfaj kiválasztása: Leggyakrabban használt állatfajok: Háziállatok: szarvasmarha, sertés, baromfi, kutya, macska Nem ember főemlősök: majom, csimpánz, cerkófmajom, selyemmajmok Kis laboratóriumi emlősök:egér, patkány, tengerimalac, hörcsög, nyúl Ezek a leggyakoribbak: kis helyigény, szaporaság, rövid tenyészidő 2. A megfelelő genetikai tényezők, tulajdonságok kiválasztása: pl. változatos v. azonos állatok

  3. Kültenyésztés:a rokontenyésztés elkerülésegenetikailag változatos állomány <100 tenyészpár: a rokontenyésztés maximális elkerülése >100 tenyészpár: rotációs v. találomra történő (random tenyésztés) A beltenyésztési együttható (a homozigóta génhelyek gyakoriságának) növekedése: <1% A kültenyésztett (outbred) állomány egyedei heterozigóták: az apai (A) és az anyai gének (B) alléljei a génhelyek túlnyomó részébenkülönbözőek (AB). A populáció anizogén: egyedei genetikailag különböznek (változatos genotípusúak).

  4. Zárt kültenyészetben is megfigyelhető a növekvő homozigótaság. Egyensúlyban lévő zárt tenyészetben az egyedek fele heterozigóta (AB), másik fele homozigóta (25% AA, ill. 25% BB) Rokontenyésztés:4 nemzedéken belüli közös ős a családfában Beltenyésztés:szigorú rokontenyésztés: sorozatos testvér-testvér, gyermek-szülő pároztatás növekvő homozigótaság (genetikai sodródás) (AB helyett AA v. BB) Beltenyésztett törzsek létrehozása:>20 nemzedéken át végzett testvér-testvér (szülő-utód) pároztatás  az összes génlokusz 98,4%-a homozigóta (F=98,4%) A beltenyésztett (inbred) törzs egyedeihomozigóták és izogének (azonos genotípusúak).

  5. A törzs bármely tagja elfogadja a bármelyik másik azonos nemű tagjából átültetett szöveteket (graft) az izogenitás ellenőrzése bőrtranszplantációval (Silvers-féle körtranszplantáció) Fenntartása: a ritka mutációk miatt testvér-testvér pároztatással.

  6. A beltenyésztett rágcsálótörzsek története: Jensen, Loeb, Ehrlich, Tyzzer: spontán egértumorok sorozatos transzplantációval történő fenntartása  többnyire sikertelen (nem eredt meg v. visszafejlődött) Jensen (1903), Loeb (1908):sikeres sorozatos tumorátoltások viszonylagosan beltenyésztett egerekben a tumorokkal szembeni fogékonyság örökletes Little (1914):a tumorrejekció, ill. a fogékonyság több dominánsan öröklődő génen alapul a hisztokompatibilitási gének, a celluláris immunválasz tanulmányozása Rommel, Wright (1906):beltenyésztett tengerimalacok (2-es és 13-as törzs)

  7. King (1909):beltenyésztett patkányok (PA, WKA törzsek) Little (1909):beltenyésztett egerek(DBA/1, DBA/2 törzsek) Bagg (1913): BALB/c egértörzs Strong (1920): A, C3H, CBA egértörzsek Little (1921): C57 egértörzsek családja 1920-1930:a leggyakrabban használt egér- és patkánytörzsek kifejlesztése 1929: A Jackson Laboratórium megalapítása (Little)

  8. Beltenyésztési depresszió (leromlás): a szaporodási képesség, életképesség, egészség stb. csökkenése Csak az első néhány generációban fordul elő. Oka:a káros recesszív gének homozigótaságaA kialakult törzsben már nem fordul elő. F1 hibridek:két genetikailag különböző beltenyésztett törzs keresztezéséből származó első generáció Minden egyed izogénésheterozigóta mindazon génlokuszokra, amelyekben a két szülői törzs különbözik(= a gének kodomináns öröklődése és kifejeződése).

  9. Ha két transzplantációs antigénekben (H Ag) eltérő törzset keresztezünk, az F1-ek mindkét szülő H Ag-jeit kifejezik → ezért az egyik szülői törzstől származó bőrgraftot sem lökik ki, a szülői törzsek viszont kilökik az F1 graftokat.

  10. Hibrid „életerő”vagy heterózis:a beltenyésztési depresszióellentétea káros recesszív gének elfedésea kialakuló heterozigótaság miatt. Nevezéktan:Nómenklatúra Bizottság (1952) Törzsnév:1-4 nagybetű Egér: A, AKR, CBA,DBA stb. Patkány: LEW, WAG, BN, PVG stb. Számok csak a korábban elterjedt törzsek esetén engedélyezettek (pl. egér: C3H, C57BL; patkány: F344, AS2, M520)

  11. Altörzs: • - a törzs két v. több ágra oszlika 8-19. testvérpároztatás között • - ugyanabban a tenyészetben két párhuzamos vonal genetikailag eltér. • Példák: C57BL/6, C57BL/10; CBA/J, CBA/Ca; A/He, A/J stb. • Alvonal: • - egy másik laboratóriumban történő hosszú tenyésztés • - a törzs bármilyen manipulációja • Altörzs, alvonal neve:törzsnév/altörzs, alvonal szimbólum(ok) történeti sorrendben (a tenyésztő v. a laboratórium nevének rövidítése, ritkán szám: pl. C57BL/10ScSn: Sc=Scott, Sn=Snell

  12. Manipulációk:f:dajkaság(foster nursing) egy másik törzsnél:pl. C57BL/10ScSnfC3H. Pl. specifikált patogénmentes (SPF)ntörzsek létrehozása a magzatok méhhel együtt történő eltávolítása és dajkaságban történő felnevelése révén • e:embriótranszfer egy másik törzsbe • h:mesterséges táplálás (hand rearing) • o:ovárium-transzplantáció • p:petesejttárolás(preservation) cseppfolyós nitrogénben • Rövidített törzsnevek: AKR=AK, BALB/c=C, C3H=C3, C57BL=B, C57BL/6=B6, C57BL/10=B10 • F1hibridek elnevezése: (nőstény szülői törzs x hím szülói törzs)F1:(BALB/c x C57BL/6)F1=CB6F1

  13. Koizogén törzsek: • Mutáció egyjelentős génlokuszonegy beltenyésztett törzsben egyúj beltenyésztett törzs kialakítása a mutációt hordozó állatokból • Az új törzs csak egyetlen génlokuszban(a mutált génben) különbözik az eredetitől a génmutáció fenotipikus hatása tanulmányozható. • A mutáció betegség alapját képezheti: • Egér: • Anémia:sla gén • Diabétesz és elhízás (obesity): db, ob gének • Anyagcsere-betegségek:his (hisztidinémia), pro (prolinémia) • Vesebetegség:kd gén • Izomsorvadás (dystrophia):dy, dy2J gén

  14. Farok (tail) fejlődési rendellenességek:t-allél • Szőrtelen (nude) és tímuszhiányos:nu • Patkány: • Diabetes insipidus:di gene • Szőrtelen (nude) és tímuszhiányos:rnu gén • Bilirubinémia:j gene • Nevezéktan:törzsnév/altörzsnév-mutáns gén neve: • BALB/c/Rij-nu, C57BL/6J-ob • Kongenikus, ill. kongenikus rezisztens törzsek: • - A kívánt gén (D)bejuttatása egy beltenyésztettdonor törzsből (2.)egy másik, (dgénallélű)recipienstörzsbe (1.)keresztezéssel  F1 hibrideklétrehozása; - az F1-ek visszakeresztezéseaz 1. (recipiens) törzsű egerekkel; - a D gént hordozó utódok (Dd) szelekciója és visszakeresztezése 1. egerekkel.

  15. Legalább 10-12 visszakeresztezés szükséges  majd egy Dd heterozigóta hím és nőstény pároztatása  ezután egy DD homozigóta hím és nőstény beltenyésztése: az új, kongenikus törzs hordozza a donor D gént, míg az összes egyéb génjei (háttérgének) azonosak a recipiens (1.) törzsével.

  16. Kongenikus rezisztens törzsek:a bőr-, ill. tumorgraftok rejekcióját kiváltó antigének génjeinek (MHC) bejuttatása a recipiens törzsbe Nevezéktan:recipienstörzs.donor törzs(gyakran rövid nevekkel): pl. B10.D2 génrecipiens: C57BL/10 (B10) (MHC=H-2b), géndonor: DBA/2 (D2) (MHC=H-2d) kongenikus rezisztens törzs = B10.D2(másik elnevezés: C57BL/10ScSn-H-2d) A B10.D2 (H-2d) törzs kongenikus a B10 (H-2b) törzzsel: csak a H-2 lokuszban térnek el, háttérgénjeik azonosak.A H-2 felfedezése= az egér fő hisztokompatibili-tási komplexe [major histompatibilitycomplex (MHC)] H-2 kongenikus törzsek közöttitranszplantáció: az MHCfelelős a graftrejekcióért.

  17. Rekombináns törzsek:két nem rokon beltenyésztett törzskeresztezésével létrehozott F2generációból származnak, >20 generáción át végzett testvér-testvér pároztatással állítják elő őket. Elnevezés: BALB/c (C) x C57BL/6 (B6)  CXBvonalak Mindkét ős génjeit hordozzák randomeloszlásban. Poligénestulajdonságok tanulmányozására alkamasak: pl. élettartam, morfológiai és fiziológiai jellemzők, betegségek, viselkedés, gyógyszerhatások stb.

  18. Transzgenikusállatok: - idegen DNS-szekvenciák = transzgének bejuttatásamegtermékenyített petesejtek pronukleuszaiba - a petesejt bejuttatása álterhes nőstények petevezetékébe - a transzgént kifejező transzgenikus állatok kiválasztása és homozigóta vonal kitenyésztése. A transzgéneketki lehet fejeztetni: -meghatározott szövetekbena megfelelő regulátoros szekvenciákhoz való kapcsolás révén (pl. antigénreceptor-gének lymphocytákban) - gyógyszerekre v. hormonokra (pl. tetraciklin, ösztrogén) válaszoló promoterekhez kapcsolva

  19. A transzgenikusállatokat lehet használni: - a transzgén élettani, patológiai hatásainak vizsgálatára; - betegségmodellként; - transzgenikus fehérjék/peptidek (gyógyszerek, hormonok stb.) nagy mennyiségben történő előállítására. Génkiütött állatok: Gének célzott mutációja v. szétrombolása homológ rekombináció révén:a kiütésre használt működésképtelen exogén génkonstrukció az endogén génnel homológ szekvenciákat tartalmaz  rekombináció  a kódoló szekvenciák diszrupciója a génexpresszió és/vagy -funkció megszűnése, deléciója A génfunkció in vivo tanulmányozása

  20. Klónozott állatok: Klón: az utód genomja teljesen azonos a kiinduló egyedével. Sejtosztódások (pl. megtermékenyített petesejtek és testi sejtek osztódása  a kiinduló sejt klónjai) Többsejtű élőlények klónozása: I. Embrióosztási technika: Rutin módszer a jó tulajdonságokkal rendelkező háziállatok klónozására(pl. szarvasmarha). Mesterségesenegypetéjű ikreket állítanak elő. Lépések: 1. Egy petesejtet mesterségesen megtermékenyítenek spermiummmal. 2. A zigótát hagyják osztódni 8-sejtes embrióvá.

  21. 3. Az embriót 2 x 4-sejtes v. leggyakrabban 4 x 2- sejtes darabokra osztják. A sejtek még nem differenciálódnak a 8-sejtes embrióban  a szétválasztott embriók genetikailag azonosak, mint az egypetéjű ikrek: ikerkészítés embrióból. 4. A szétválasztott embriókat hagyják fejlődni in vitro. 5. Azután beültetik őket egy álterhes nőstény méhébe.

  22. II. Testi sejtmag átvitele [somatic cell nuclear transfer (SCNT)] Ian Wilmut és Keith Campbell, Roslin Intézet, Skócia, 1997: a Dolly bárány létrehozása Az SCNT-hez két sejt szükséges:a magdonor testi sejt + egy megtermékenyítetlen petesejtmint recipiens sejt: - A petesejt megfelelőbb recipiens sejt, mint a testi sejtek: könnyebb osztódásra késztetni. - megtermékenyítetlen petesejt könnyebben befogadja a sejtmagot, mint a megtermékenyített. Az SCNT lépései (the Roslin-technika): 1. A donorsejtet (a Dolly esetében emlőmirigysejt) fötális borjúsavót tartalmazó tápfolyadékban tenyésztik, és hagyják osztódni in vitro.

  23. 2. Ezután a sejteket FCS-mentes tápfolyadékba helyezik  az osztódás leáll, és a sejtek G0 v. nyugalmi állapotba kerülnek. Ez szükséges, hogy a recipens sejt befogadja a donormagot. 3. A sejtmagot eltávolítjáka petesejtből. 4. A donorsejtet a mag nélküli recipens sejt közelébe helyezik. 5. 1-8 órával a mageltávolítás után  elektromos inger: - donorsejt (v. izolált mag) fúziója a mag nélküli petesejttel; - a sejtosztódás aktivációja és az embrió fejlődése

  24. A differenciált donorsejt genetikai programja lenullázódik a petesejtben  differenciálatlan, pluripotens sejt 6. Az embriót birka-petevezetékbe helyezik 5-6 napra (itt az embriók túlélése jobb, mint szövettenyészetben). 7. Amikor az embrió eléri a blasztoméra állapotot (kb. 100 sejt), az embriót beültetik egy dajka anya méhébe. 8. Az anya kihordja a terhességet. Az utódok a donor genetikailag pontos másolatai  reproduktív klónozás A blasztomérákatőssejtforrásként is lehet használni.

  25. Honolulu-technika:egerek sikeres klónozása A klónozott állatok képesek voltak normálisan szaporodni, fenntartani a klónt szexuális reprodukció révén. Kromatintranszfer: A klónozandó sejtek kezelése eltávolítja a sejtdifferenciálódással kapcsolatos molekulákat, mielőtt a magot eltávolítják  a genetikai program lenullázódása könnyebben megyvégbe.

More Related