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第八章 原生质体培养 宜职院 08.9

第八章 原生质体培养 宜职院 08.9. 目的与要求 掌握植物细胞原生质体培养的意义,了解原生质分离方法,原生质纯化方法和活力测定方法。掌握植物原生质体的培养方法及其特点,以及存活率、密度、产量的测定方法。掌握原生质体融合概念、介绍原生质体融合方法,了解杂种细胞的筛选、鉴定和杂种植株的鉴定方法。 具备原生质体分离、纯化基本认知,具有原生质体培养基本能力,能够理解原生质体融合概念及方法。. 一、原生质体概念 原生质体:原生质体去掉细胞壁的由质膜包裹着的裸细胞。 二、原生质体培养意义:

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第八章 原生质体培养 宜职院 08.9

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  1. 第八章 原生质体培养 宜职院08.9

  2. 目的与要求 掌握植物细胞原生质体培养的意义,了解原生质分离方法,原生质纯化方法和活力测定方法。掌握植物原生质体的培养方法及其特点,以及存活率、密度、产量的测定方法。掌握原生质体融合概念、介绍原生质体融合方法,了解杂种细胞的筛选、鉴定和杂种植株的鉴定方法。 具备原生质体分离、纯化基本认知,具有原生质体培养基本能力,能够理解原生质体融合概念及方法。

  3. 一、原生质体概念 原生质体:原生质体去掉细胞壁的由质膜包裹着的裸细胞。 二、原生质体培养意义: 1、原生质体没有细胞壁,有利于细胞融合,体细胞杂交,基因转移和单细胞培养。 2、原生质体能比较容易摄取外来的遗传物质,作为理想的受体系统进行各种遗传操作的研究,实现体细胞杂交在植物遗传育种方面的应用。

  4. 第一节原生质体的分离与纯化 一、原生质体的分离 (一) 材料来源 叶片,花瓣,果实组织,花瓣髓部,子叶等,尤其是叶肉细胞及由各部分形成的培养细胞和悬浮细胞。

  5. (二)分离方法 1、机械分离法 产生质壁分离——释放原生质体 缺点: 原生质体的产量很低;方法繁琐费力;因必须高度质壁分离,故局限性大。 优点: 能够排除外加酶对离体原生质体的结构和代谢活性的有害影响。

  6. 2、酶分离法 收率高、活力强、完整性好。分离原生质体最有 效。 (1)酶的种类及特点 分离原生质体的酶多是一些复合酶制剂,以其所含的主要酶的作用分为: 1、纤维素酶类 2 半纤维素酶类 3 果胶酶类 4 崩溃酶 5 蜗牛酶

  7. (2)酶液的配制 1、酶的配比和浓度 2、渗透压和稳定剂及PH。

  8. (3)分离原生质体 1、两步分离法。用果胶酶离析植物组织,收集细胞,经洗涤后用纤维素酶解离细胞壁,然后获得原生质体。 2、一步分离法。一定量的纤维素酶和果胶酶组成混合酶液,对材料进行一次性处理。

  9. 叶肉原生质体分离纯化

  10. 纯化后的叶肉原生质体

  11. 二、原生质体的纯化与活力测定 (一)原生质体的纯化 1、离心沉淀法 2、漂浮法 3、界面法 (二)原生质体活力的测定: 1、形态识别 形态上完整,含有饱满的细胞质,颜色新鲜的原生质体即为存活的。 2、染色识别 用0.1%酚番红或Evans蓝进行染色。

  12. 第二节 原生质体培养 一、培养基 1、碳源:葡萄糖 2、氮源:谷氨酰胺 3、生长物质:生长素与细胞分裂素 4、钙源:可增强稳定性,提高分裂频率,明显改变细胞质内外的离子交换。 5、渗透压:高渗溶液,培养时一般逐步过渡,通常的渗透剂是甘露醇和山梨醇。 6、PH5.6~6.0,醋酸纤维微孔滤膜过滤灭菌

  13. 原生质体培养程序示意图

  14. 二、培养方法 1、液体浅层培养 原生质体(约2×105/ml密度)悬浮在液体培养基—将悬浮物质移到直径为60cm的平皿中(2-3mm为宜)—5-10天后开始原生质体分裂 特点:通气好,原生质体代谢物易扩散,防止有害物质积累过多造成毒害,转移添加新鲜培养基方便,便于观察和照相。操作简单,可微量培养,细胞植板率高。但原生质体沉淀,分布不均,细胞团聚集多,难成单细胞株系。

  15. 2、平板法培养 原生质体(密度为4×105/ml)与等量体积琼脂糖培养基均匀混合—置于6cm培养皿(2-3mm),暗培养—5-7天原生质体开始分裂 特点:原生质体分布均匀,利于分裂,容易获得单胞株系,可定位观察。原生质体易受热伤害,易破碎,原生质体始终处于高渗透压胁迫下生长发育缓慢,植板率低。

  16. 3、悬滴法培养 将含一定密度原生质体的悬浮液,滴在6cm培养皿盖内侧上,皿底加入培养液和渗透剂等液体保湿,此时培养小滴悬挂在皿盖内。 特点:用材少,培养液消耗少,利于通风与观察,可做原生质体不同密度的培养对比试验,进行单细胞培养。

  17. 4、双层培养法 固体培养和液体培养浅层培养相结合的方法,效果最佳。原生质体采用平板培养方法包埋在培养皿底层,上面再加入相同成分的液体培养基,暗培养。需更换新鲜液体培养基。 特点:原生质体分布均匀,有利于分裂,易获单细胞株系,能除去抑制分裂的有害物质,细胞植板率高。原生质体易受热伤害,易破碎。

  18. 5、饲喂培养法 将饲喂的细胞用培养基作平板,此平板称饲喂层,用X射线或紫外线照射,使核失活但细胞存活,然后将原生质体以液体浅层培养或平板技术铺在饲喂层上。 特点:以一种植物细胞制成的平板,支持另一种植物原生质体的生长。饲喂层没有种的特异性。

  19. 三、培养条件25-27℃,光照16h/d,最初几天经常摇动,以助透气。四、原生质体存活率、密度及产量的测定(一)双醋酸盐荧光素染色法测定存活率 存活率=存活原生质体数/总原生质体数×100%(二)测定原生质体的密度 原生质体的密度(个/ml)=(原生质体数/1区域)×104×稀释倍数

  20. (三)原生质体产量的测定Y=DV / FWY(个/g)——原生质体产量D(个/ml)——存活原生质体密度V(ml)——制备所得原生质体悬液的总体积FW(g)——制备原生质体所用材料的鲜重

  21. 第三节 原生质体融合 也称体细胞杂交,就是分离下来的不同亲本杂交的原生质体,在人工控制下,像性细胞受精作用那样互相融合成一体。 自然条件下,原生质体自然融合频率极低,必须加以一定的方法诱导,才能促进原生质体的融合。

  22. 原生质体融合

  23. 甘薯原生质体融合植株

  24. 二、原生质体融合的方法和过程(一)无机盐诱导融合 硝酸钠(二)聚乙二醇(PEG)诱导剂与高钙相结合的诱导融合1、PEG诱导剂溶液配制:分子量为4000-6000。2、高Ca2+-高PH液3、原生质体培养基:NT与MS

  25. 4、融合过程 (1)收集原生质体 (2)滴150ul混合双亲的原生质体悬浮液于载体玻片上,形成一层薄层。 (3)吸取PEG融合诱导液450u ,使PEG溶液逐渐与原生质体接触,促使原生质体相粘连。 (4)保温后,取高Ca2+-高PH溶液0.5ml,滴入原生质体悬浮液与PEG混合液中。

  26. (5)吸取2ml原生质体培养基洗涤PEG处理过的原生质体5次。(5)吸取2ml原生质体培养基洗涤PEG处理过的原生质体5次。 (6)在载玻片上的材料上,加上一层原生质体生长所须的培养基 (7)融合百分率计算 融合百分率=融合数目/两亲本原生质体总数×100%

  27. 完整洋葱原生质体(40×) 完整烟草原生质体(40×)

  28. (三)电融合技术 1、将原生质体悬浮液离心,去上清,用电击液(10%甘露醇,0.1mmol/L醋酸钙,0.5mmol/L醋酸镁) 2、对电融合仪的交变电场频率,高压方波幅值和持续时间、次数、间隔时间进行预先设置试验。 3、取1-2滴悬浮液与电融合仪极间。 4、1-2min后,给予瞬间的高度电脉冲。

  29. 三、杂种细胞的筛选与鉴定 (一)互补筛选 1、白化互补选择法 2、营养缺陷型互补选择 3、抗性互补选择 4、代谢互补仰制选择 (二)机械分离杂种细胞法法 (三)双荧光标记选择法

  30. 双荧光素标记

  31. 作业: 1、说明机械分离法和酶分离法的特点 2、原生质体纯化方法有哪些?原生质体活力的测定方法有哪些? 3、简述原生质体五种培养方法及特点 4、原生质体融合有哪几种方法?

  32. 四、杂种植株的鉴定 1、形态学鉴定 2、细胞学观察 3、DNA内切图谱分析法 4、同工酶分析法

  33. 思考题: 1、说明机械分离法和酶分离法的特点 2、原生质体纯化方法有哪些?原生质体活力的测定方法有哪些? 3、简述原生质体五种培养方法及特点 4、原生质体融合有哪几种方法?

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