1 / 15

SDS-PAGE

SDS-PAGE. Praktikum Proteinchemie Meike Flentje und Julia Schwab 17.05.2013. Inhalt. Theorie Einleitung SDS-PAGE SDS-PAGE Probenvorbereitung Coomassie Gelfärbung Versuchsdurchführung Ergebnisse Literatur. [1]. Einleitung.

mignon
Télécharger la présentation

SDS-PAGE

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. SDS-PAGE Praktikum Proteinchemie Meike Flentje und Julia Schwab 17.05.2013

  2. Inhalt • Theorie • Einleitung • SDS-PAGE • SDS-PAGE Probenvorbereitung • Coomassie Gelfärbung • Versuchsdurchführung • Ergebnisse • Literatur SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab [1]

  3. Einleitung • Ziel: Produktion und Aufreinigung von dem Protein FGF-2 • Es handelt sich um einen Wachstumsfaktor • Dieser bindet an den FGF-2 Rezeptor und führt zur Dimerisierung SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab [2]

  4. SDS-PAGE • Eindimensionale Auftrennungsmethode nach der Größe • DiskontinuirlichesTris-HCL / Tris-Glycin Puffersystem • Sammelgel: weitporig , pH 6,8 und geringere Pufferstärke sowie Stapelung der Proteine • Glycin: Folge-Ion wegen geringer Mobilität • Chlorid: Leit-Ion wegen hoher Mobilität SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  5. SDS-PAGE • Trenngel: pH 8,8 sowie eng porig und damit erfahren die Proteine einen höheren Reibungswiderstand • Folge: bessere Auftrennung und schärfere Banden [3] SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  6. SDS-PAGE Probenvorbereitung • Red. Laufpuffer mit einem Überschuss an SDS • Erwärmung der Proben auf 95 °C • Denaturierung • DTT spaltet die Disulfidbrücken • SDS kann sich anlagern und eine negative Mizelle bilden, damit werden Eigenladungen abgeschirmt • -> Gesamtladung ist proportional zur Proteingröße [4] SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  7. Coomassie Gelfärbung • Farbmittel: Coomassie Brillant Blue R-250 • Unspezifische Proteinfärbung • Interaktion mit den basischen Resten, damit werden Lysin, Arginin und Histidin detektiert SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  8. Versuchsdurchführung • Gel gießen • Probenvorbereitung • Proben auftragen • Gellauf • Coomassie Färbung SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  9. Ergebnisse Abb. 3: : 14: 34 h (A) (7 µL); 15-20: 34 h-44 h (B) (7 µL); 21: 46 h (A) (7 µL); M: Protein-Marker (3 µL); 22: Gesamtzellprotein (A) (7 µL); 23: lösliche Proteine (A) (7 µL); 24: unlösliche Proteine (A) (7 µL); 25: Gesamtzellprotein (B) (7 µL); 26: lösliche Proteine (B) (7 µL); 27: unlösliche Proteine (B) (7 µL) Abb. : SDS-PAGE nach der Kultivierung: 1: Vorkultur (A) (7 μL); 2-7: 12 h-22 h (B) (7 μL); 8-13: 22 h-32 h (A) (7 μL); M: Protein-Marker (3 μL) SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  10. Ergebnisse Abb. 4: SDS-PAGE nach der Kationenaustausch-Membran-Chromatographie: Probe 1-23 (10 μL); M: Protein-Marker (3 μL) SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  11. Ergebnisse Abb. 5: SDS-PAGE nach der Heparin-Sepharose-Affinitäts-Chromatographie: M: Protein-Marker (3 μL); 1-16: Probe (10 μL) SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  12. Ergebnisse Abb. 6: Zusammenfassung der Ergebnisse: 1: Gesamtzellprotein (B) (10 μL); 2: lösliche Proteine (B) (10 μL); 3: unlösliche Proteine (B) (10 μL); M: Protein-Marker (4 μL); 4-5: Heparin-Sepharose-Affinitäts-Chromatographie K + M (15 μL) SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  13. Vielen Dank für eure Aufmerksamkeit Fragen? SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  14. Literatur • [1] Atherton, B. A.; Cunningham, E. L.; Splittgerber, A. G.: A mathematical model forthedescrip-tionoftheCoomassiebrilliantblueproteinassay. In: Anal Biochem. 233(2), S. 160-8 (1996). • [2] Fazekas de St. Groth, S.; Webster, R. G.; Datyner, A.: Twonewstainingproceduresforquantit-ativeestimationofproteins on electrophoreticstrips. In: Biochimica et Biophysica Acta. 71, S. 377–391 (1963). • [3] Laemmli, U. K.: Cleavageofstructuralproteinsduringtheassemblyoftheheadofbacterio-phage T4. In: Nature. 227, S. 680-685 (1970). • [4] Lottspeich, H.; Zorbas, H.: Bioanalytik. 1. Aufl. Heidelberg: Spektrum, Akad. Verl. (1998). • [5] Reinard, T.: Molekularbiologische Methoden. 1. Aufl. Stuttgart: Eugen Ulmer KG. (2010). SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

  15. Literatur - Bild • Bild 1: http://commons.wikimedia.org/wiki/File:Protein_FGF2_PDB_1bas.png; 28.05.2013 • Bild 2: http://www.pnas.org/content/96/7/3658/F2.expansion.html; 28.05.2013 • Bild 3: https://www.goldbio.com/FGF2-Basic-FGF-Human-P5983-C241.php; 28.05.2013 • Bild 4: http://www.bio-rad.com/evportal/en/US/LSR/Solutions/LUSOW4GRI/Protein-Electrophoresis-Methods; 28.05.2013 SDS-PAGE Meike Flentje & Julia Schwab

More Related